Товар временно недоступен. Аналог FV5000, Evident (Olympus).

Компактный представитель лазерных сканирующих микроскопов серии LSM 7, в средней ценовой категории, для рутинных задач биологии, медицины и материаловедения. Главным преимуществом является прецизионное спектральное сканирование с уникальным вариабельным вторичным делителем луча.

LSM 700 - компактный конфокальный лазерный сканирующий микроскоп. Уникальная конструкция в сочетании с чувствительными детекторами позволяет максимально минимизировать потери сигнала.

Микроскоп оснащен полупроводниковыми светодиодными лазерами, которые являются надежными, долговечными и стабильными в работе источниками возбуждения. Так как лазерные линии микроскопа LSM 700 равномерно распределены по оптическому спектру, нам достаточно всего четырех лазерных линий для работы со всеми известными флуоресцентными красителями.

Система детекции микроскопа имеет два детектора на основе сверхчувствительных фотоэлектронных умножителей, при этом благодаря уникальному запатентованному вторичному делителю луча «VSD» мы можем производить спектральное сканирование без использования многоканальных громоздких детекторов. Такая конструкция делает дизайн микроскопа компактным и удобным для эксплуатации.

Современное программное обеспечение ZEN 2012 обладает функцией Smart Setup, которая позволяет работать на микроскопе даже начинающему пользователю. Вам просто необходимо выбрать нужные флуоресцентные красители из списка, остальные настройки системы программа сделает самостоятельно. Эта функция, а также возможность сочетать любые режимы (временные серии, Z–Стэки, области интереса, и.т.п) в одном эксперименте, является ключевым преимуществом ZEN. Кроме того, программа имеет расширенные возможности по трехмерной реконструкции объектов из полученных серий оптических срезов.

Технические характеристики:

• Высокочувствительные детекторы (каналы) - один или два, в зависимости от конфигурации (биологическая или для задач материаловедения);
• Произвольный выбор спектрального диапазона регистрации сигнала - одновременно в двух каналах с шагом до 1 нм;
• Сканирующее разрешение от 4 х 1 до 2048 х 2048 пикселей;
• Скорость сканирования 13 х 2 скоростей сканирования;
• 5 рамок/сек при 512 х 512 пикселей или 2600 линий/сек при 512 пикселей;
• Сканирующее увеличение ZOOM от 0,5х до 40х с шагом 0,1х;
• Свободное вращение на 360 ° сканирующей рамки;
• Моторизованный конфокальный Pinhole с плавным изменением диаметра и координат;
• Разрядность данных - 8, 12 или 16 бит;
• VIS-AOTF температурно-стабилизированный акустооптический контроль интенсивности лазерных линий, время переключения < 5 мксек;
• Лазеры с предустановленными, заранее отъюстированными световодами (Pigtail-coupled);
• Видимый диапазон (VIS) диодный лазер (405 нм) 5 мВт или диодный лазер (445 нм) 5 мВт; диодный лазер (488 нм) 10 мВт; диодный лазер (555 нм) 10 мВт; диодный лазер;
• До 4-х лазерных источников одновременно.

Развитие генной инженерии, протеомики, биотехнологии, современной фармацевтики и биомедицины способствовало быстрому внедрению новых методов конфокальной микроскопии, и в настоящее время они широко используются в клеточной биологии.

Конфокальную флуоресцентную микроскопию можно рассматривать как разновидность традиционной флуоресцентной микроскопии, которая позволяет исследовать внутреннюю микроструктуру клеток, причем не только фиксированных, но и живых, идентифицировать микроорганизмы, структуры клетки и отдельные молекулы, наблюдать динамические процессы в клетках. Конфокальная флуоресцентная микроскопия в дополнение к этому обеспечила возможность трехмерного субмикронного разрешения объекта и существенно расширила возможность неразрушающего анализа прозрачных образцов. Повышение разрешающей способности достигается благодаря использованию в конфокальных микроскопах лазеров в качестве источников света и конфокальной диафрагмы для фильтрации внефокусной флуоресценции. Преимущество лазеров по сравнению с ртутными или ксеноновыми лампами заключается в монохроматичности и высокой параллельности испускаемого пучка света. Эти свойства лазерного излучения обеспечивают более эффективную работу оптической системы микроскопа, уменьшают число бликов, улучшают точность фокусировки пучка света. На образце лазер освещает не все поле зрения, как в ламповом флуоресцентном микроскопе, а фокусируется в точку. Конечно, при этом лазерный луч возбуждает флуоресценцию как в точке фокуса, так и во всех слоях образца, через которые проходит. И если эта внефокусная флуоресценция, излучаемая слоями, расположенными выше и ниже фокальной плоскости, регистрируется вместе с основным сигналом из фокуса объектива, это ухудшает разрешение оптической системы. Избавиться от внефокусной флуоресценции позволяет конфокальная диафрагма. Изменяя диаметр конфокальной диафрагмы, можно определять толщину оптического слоя вблизи фокуса лазерного луча, поэтому флуоресценция, испускаемая выше и ниже фокуса, оказывается дефокусированной на конфокальной диафрагме и не регистрируется. Благодаря этому конфокальная микроскопия обеспечивает улучшенное разрешение, в первую очередь вдоль оси Z.

Современная конфокальная микроскопия позволяет решать три основные задачи: изучение тонкой структуры клетки, колоколизации (пространственного взаиморасположения) в клетке двух или более веществ, а так же исследование динамических процессов, протекающих в живых клетках.

Благодаря улучшенному разрешению, особенно повышенному разрешению по оси Z, и возможности создавать серии «оптических» срезов, конфокальный микроскоп позволяет исследовать тонкую структуру объекта в трехмерном пространстве. Специальные программы позволяют создать из серии оптических срезов объемное изображение объекта (3D) и как бы рассматривать его под разными углами зрения, что может дать ценную информацию о форме клеток, цитоскелете, структуре ядра, хромосомах и даже локализации в них отдельных генов, а так же о взаиморасположении этих элементов.

Использование мультиспектрального (с несколькими флуорохромами) режима работы лазерного сканирующего конфокального микроскопа позволяет исследовать колоколизацию (пространственное взаиморасположение) в клетке двух или более разных веществ, например, белков, помеченных разными флуоресцентными красителями. Исследуя такие препараты в обычном флуоресцентном микроскопе, нельзя с уверенностью утверждать, находятся эти вещества рядом или одно под другим. С помощью метода оптических срезов и дальнейшей 3D-реконструкции объекта можно воссоздать объемное распределение веществ. Мультиспектральный режим так же позволяет проводить на конфокальном микроскопе исследования методом FISH.

Возможность получать временные серии изображений с высоким пространственным разрешением позволяет исследовать изменения, происходящие в клетках и их структурах во времени (4D реконструкция). Кроме того, благодаря наличию лазеров и системы сканирования можно осуществлять не только регистрацию временных изменений, но и осуществлять воздействие на клеточные структуры лазерным излучением с одновременным наблюдением протекающих процессов.

Методы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии получили широкое распространение в фундаментальных науках, а также все шире применяются в практических исследованиях и диагностической медицине.

Методы конфокальной микроскопии позволяют выявить способность веществ накапливаться в цитоплазме, ядре или других структурах клетки, зарегистрировать образование метаболитов, измерить кинетику накопления и метаболизма веществ в клетке, скорость выведения веществ из клетки, сравнить интенсивность метаболизма в различных клеточных линиях и в различных условиях. Эти методы все шире применяются в исследованиях механизмов действия как канцерогенов, так и лекарственных препаратов и противоопухолевых соединений, позволяют рассчитывать их эффективные концентрации.

Анализ интенсивности и формы спектров собственной флуоресценции позволяет распознавать нормальные и воспаленные клетки, и такой метод, в частности, предложен в качестве нового способа ранней диагностики шейки матки.

Подобрав комбинацию фильтров для нескольких типов собственной флуоресценции, возможно без проведения гистохимического окрашивания и трудоемкого получения и исследования множества срезов различать злокачественные и нормальные тканевые структуры в биопсийных пробах лимфоузлов пациентов с лимфоаденопатией различного происхождения.

Методы конфокальной микроскопии широко применяются в эмбриологии и гидробиологии, ботанике, зоологии при изучении структуры гамет, развития и формирования организмов.

Конфокальная микроскопия постоянно развивается, и в практику внедряются все новые методы исследований для изучения механизмов функционирования организмов на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, которые с каждым днем становятся все более востребованными в прикладных исследованиях и диагностике. Появление персонального конфокального лазерного сканирующего микроскопа FV10i позволяет расширить границы применения конфокальных методик. Микроскоп FV10i выполняет те же функции, что и высокотехнологичные исследовательские конфокальные сканирующие системы FV1000. В компактный корпус интегрированы все основные компоненты: 4 диодных лазера, спектральный сканирующий детектор, интуитивно понятное программное обеспечение, инкубатор, моторизованный столик, антивибрационная платформа и даже «темная комната». Этот микроскоп идеален для тех, кто только начинает работать с конфокальным методиками, для тех, кто хотел бы освободить исследовательские конфокальные микроскопы от рутинных задач, для диагностических лабораторий, лабораторий с ограниченным бюджетом, для обучающих задач и случаев проведения исследований в условиях ограниченного комфорта, например, на биологических станциях.

Товар временно недоступен. Аналог FV5000, Evident (Olympus).

Конфокальный лазерный сканирующий микроскоп с уникальной оптической схемой и системой детектирования, которые позволяют получать оптические срезы с максимальной эффективностью. Вы можете работать с мультиканальной флуоресценцией вплоть до десяти красителей и использовать непрерывную спектральную детекцию во всем видимом диапазоне длин волн.

LSM 710 на инвертированном штативе микроскопа Axio Observe Z1 - это непревзойденный конфокальный микроскоп для клеточной биологии и биологии развития. Совместно с прямым штативом AxioImager или AxioEmainer - LSM 710 превращается в инструмент для работы в нейробиологии, физиологии и изучении биовзаимодействий в самом широком спектре экспериментов.

Оптическая схема предполагает использование до восьми лазерных портов и любую комбинацию лазерных линий от близкого УФ спектра до ИК. 34-канальный модуль детекции QUASAR позволяет оптимальную стратегию захвата для различных спектров излучения, без привязки к фильтрам и дихроичным зеркалам. Вы всегда можете направить любую часть спектра сигнала на любой выбранный Вами детектор.

Спектральное сканирование предполагает эксперименты с высоким разрешением и обнаружением до 10 каналов одновременно.

В сканирующем модуле LSM 710 используется передовое техническое решение: возвратный контур спектральной переработки (Spectral Recycling Loop), обеспечивающий усиление сигнала за счет многократного повторного пропускания через спектральную решетку всех неразделенных частей флуоресцентного сигнала. Коррекция плоскости поляризации части флуоресценции увеличивает суммарный эмиссионный сигнал в среднем на 15 -17 %!

Модификация LSM 710 NLO - это лазерный сканирующий микроскоп, оснащенный фемтосекундным мультифотонным лазером, генерирующим излучение высокой плотности в инфракрасной области 680-1080 нм. Благодаря свойствам такого лазера мы можем проникать на глубину до 500 мкм, при этом возбуждение происходит только внутри фокального микрообъема, менее 0,1 мкм³, что позволяет бережно воздействовать на живую ткань.

Технические характеристики:

• Сканирующий модуль с двумя, тремя одноканальными высокочувствительными детекторами или с 34-х канальным спектральным детектором для быстрого параллельного захвата полного эмиссионного профиля;
• Произвольный выбор спектрального диапазона регистрации сигнала с разрешением до 3 нм (последовательное сканирование) и 10 нм (параллельное сканирование);
• Детектор проходящего света;
• Независимых гальванометрических сканирующих зеркала Два;
• Сканирующее разрешение от 4 х 1 до 6144 х 6144 пикселей;
• Скорость сканирования - 14 х 2 скоростей сканирования; 5 рамок/сек при 512 х 512 пикселей; 0.38 мсек/линию из 512 пикселей (2619 линий/сек);
• Сканирующее увеличение ZOOM от 0.6х до 40х с шагом 0.1х;
• Свободное вращение на 360° сканирующей рамки;
• Конфокальный pinhole - моторизованный конфокальный pinhole плавной регулировкой диаметра и координат;
• Разрядность данных - 8, 12 или 16 бит;
• Лазерные линии - 355, 405, 458, 488, 514, 543, 561, 594, 633; перестраиваемый 488-640;
• Варианты штативов - инвертированный AxioObserver; прямой AxioImager; прямой с фиксированным столиком AxioExaminer.

Развитие генной инженерии, протеомики, биотехнологии, современной фармацевтики и биомедицины способствовало быстрому внедрению новых методов конфокальной микроскопии, и в настоящее время они широко используются в клеточной биологии.

Конфокальную флуоресцентную микроскопию можно рассматривать как разновидность традиционной флуоресцентной микроскопии, которая позволяет исследовать внутреннюю микроструктуру клеток, причем не только фиксированных, но и живых, идентифицировать микроорганизмы, структуры клетки и отдельные молекулы, наблюдать динамические процессы в клетках. Конфокальная флуоресцентная микроскопия в дополнение к этому обеспечила возможность трехмерного субмикронного разрешения объекта и существенно расширила возможность неразрушающего анализа прозрачных образцов. Повышение разрешающей способности достигается благодаря использованию в конфокальных микроскопах лазеров в качестве источников света и конфокальной диафрагмы для фильтрации внефокусной флуоресценции. Преимущество лазеров по сравнению с ртутными или ксеноновыми лампами заключается в монохроматичности и высокой параллельности испускаемого пучка света. Эти свойства лазерного излучения обеспечивают более эффективную работу оптической системы микроскопа, уменьшают число бликов, улучшают точность фокусировки пучка света. На образце лазер освещает не все поле зрения, как в ламповом флуоресцентном микроскопе, а фокусируется в точку. Конечно, при этом лазерный луч возбуждает флуоресценцию как в точке фокуса, так и во всех слоях образца, через которые проходит. И если эта внефокусная флуоресценция, излучаемая слоями, расположенными выше и ниже фокальной плоскости, регистрируется вместе с основным сигналом из фокуса объектива, это ухудшает разрешение оптической системы. Избавиться от внефокусной флуоресценции позволяет конфокальная диафрагма. Изменяя диаметр конфокальной диафрагмы, можно определять толщину оптического слоя вблизи фокуса лазерного луча, поэтому флуоресценция, испускаемая выше и ниже фокуса, оказывается дефокусированной на конфокальной диафрагме и не регистрируется. Благодаря этому конфокальная микроскопия обеспечивает улучшенное разрешение, в первую очередь вдоль оси Z.

Современная конфокальная микроскопия позволяет решать три основные задачи: изучение тонкой структуры клетки, колоколизации (пространственного взаиморасположения) в клетке двух или более веществ, а так же исследование динамических процессов, протекающих в живых клетках.

Благодаря улучшенному разрешению, особенно повышенному разрешению по оси Z, и возможности создавать серии «оптических» срезов, конфокальный микроскоп позволяет исследовать тонкую структуру объекта в трехмерном пространстве. Специальные программы позволяют создать из серии оптических срезов объемное изображение объекта (3D) и как бы рассматривать его под разными углами зрения, что может дать ценную информацию о форме клеток, цитоскелете, структуре ядра, хромосомах и даже локализации в них отдельных генов, а так же о взаиморасположении этих элементов.

Использование мультиспектрального (с несколькими флуорохромами) режима работы лазерного сканирующего конфокального микроскопа позволяет исследовать колоколизацию (пространственное взаиморасположение) в клетке двух или более разных веществ, например, белков, помеченных разными флуоресцентными красителями. Исследуя такие препараты в обычном флуоресцентном микроскопе, нельзя с уверенностью утверждать, находятся эти вещества рядом или одно под другим. С помощью метода оптических срезов и дальнейшей 3D-реконструкции объекта можно воссоздать объемное распределение веществ. Мультиспектральный режим так же позволяет проводить на конфокальном микроскопе исследования методом FISH.

Возможность получать временные серии изображений с высоким пространственным разрешением позволяет исследовать изменения, происходящие в клетках и их структурах во времени (4D реконструкция). Кроме того, благодаря наличию лазеров и системы сканирования можно осуществлять не только регистрацию временных изменений, но и осуществлять воздействие на клеточные структуры лазерным излучением с одновременным наблюдением протекающих процессов.

Методы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии получили широкое распространение в фундаментальных науках, а также все шире применяются в практических исследованиях и диагностической медицине.

Методы конфокальной микроскопии позволяют выявить способность веществ накапливаться в цитоплазме, ядре или других структурах клетки, зарегистрировать образование метаболитов, измерить кинетику накопления и метаболизма веществ в клетке, скорость выведения веществ из клетки, сравнить интенсивность метаболизма в различных клеточных линиях и в различных условиях. Эти методы все шире применяются в исследованиях механизмов действия как канцерогенов, так и лекарственных препаратов и противоопухолевых соединений, позволяют рассчитывать их эффективные концентрации.

Анализ интенсивности и формы спектров собственной флуоресценции позволяет распознавать нормальные и воспаленные клетки, и такой метод, в частности, предложен в качестве нового способа ранней диагностики шейки матки.

Подобрав комбинацию фильтров для нескольких типов собственной флуоресценции, возможно без проведения гистохимического окрашивания и трудоемкого получения и исследования множества срезов различать злокачественные и нормальные тканевые структуры в биопсийных пробах лимфоузлов пациентов с лимфоаденопатией различного происхождения.

Методы конфокальной микроскопии широко применяются в эмбриологии и гидробиологии, ботанике, зоологии при изучении структуры гамет, развития и формирования организмов.

Конфокальная микроскопия постоянно развивается, и в практику внедряются все новые методы исследований для изучения механизмов функционирования организмов на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, которые с каждым днем становятся все более востребованными в прикладных исследованиях и диагностике. Появление персонального конфокального лазерного сканирующего микроскопа FV10i позволяет расширить границы применения конфокальных методик. Микроскоп FV10i выполняет те же функции, что и высокотехнологичные исследовательские конфокальные сканирующие системы FV1000. В компактный корпус интегрированы все основные компоненты: 4 диодных лазера, спектральный сканирующий детектор, интуитивно понятное программное обеспечение, инкубатор, моторизованный столик, антивибрационная платформа и даже «темная комната». Этот микроскоп идеален для тех, кто только начинает работать с конфокальным методиками, для тех, кто хотел бы освободить исследовательские конфокальные микроскопы от рутинных задач, для диагностических лабораторий, лабораторий с ограниченным бюджетом, для обучающих задач и случаев проведения исследований в условиях ограниченного комфорта, например, на биологических станциях.

Товар временно недоступен. Аналог FV5000, Evident (Olympus).

Конфокальный лазерный сканирующий микроскоп, обладающий уникальными характеристиками по чувствительности. 32-канальный спектральный детектор GaAsP имеет квантовую эффективность и соотношение сигнал-шум почти в два раза выше, чем обычные детекторы на основе ФЭУ.

LSM 780 - конфокальный лазерный сканирующий микроскоп, обладающий уникальными характеристиками по чувствительности. 32-канальный спектральный детектор GaAsP имеет квантовую эффективность и соотношение сигнал-шум почти в два раза выше, чем обычные детекторы на основе ФЭУ. Такие выдающиеся характеристики получены благодаря использованию Галлий-Арсенид-Фосфора - полупроводникового материала с идеальными характеристиками для преобразования фотонов в электрический сигнал. Благодаря такой чувствительности вы проводите эксперименты с меньшим временем воздействия на образец и меньшими мощностями лазера, что является ключевым преимуществом в изучении живых клеток.

Благодаря инновационной системе детекции, возможно проведение флуоресцентной корреляционной спектроскопии и подсчет фотонов без дополнительных внешних датчиков. В составе LSM 780 доступен уникальный ультрафиолетовый лазер с длиной волны 355 нм для проведения фотоманипуляций.

Модификация LSM 780 NLO - это лазерный сканирующий микроскоп, оснащенный фемтосекуным мультифотонным лазером генерирующим излучение высокой плотности в инфракрасной области 680-1080 нм. Благодаря свойствам такого лазера, мы можем проникать на глубину до 500 мкм, при этом возбуждение происходит только внутри фокального микрообъема, менее 0,1 мкм3, что позволяет бережно воздействовать на живую ткань.

Технические характеристики:

• Сканирующий модуль с 32-канальным GaAsP детектором и двумя ФЭУ (охлаждаемый в красной области спектра);
• Произвольный выбор спектрального диапазона регистрации сигнала с разрешением до 3 нм (последовательное сканирование) и 10 нм (параллельное сканирование);
• Детектор проходящего света;
• Два независимых гальванометрических сканирующих зеркала;
• Сканирующее разрешение от 4 х 1 до 6144 х 6144 пикселей;
• Скорость сканирования 14 х 2 скоростей сканирования; 8 рамок/сек при 512 х 512 пикселей, 0.38 мсек/линию из 512 пикселей (2619 линий/сек);
• Сканирующее увеличение ZOOM от 0.6х до 40х с шагом 0.1х;
• Свободное вращение на 360° сканирующей рамки;
• Моторизованный конфокальный pinhole плавной регулировкой диаметра и координат;
• Разрядность данных - 8, 12 или 16 бит;
• Лазерные линии - 355, 405, 458, 488, 514, 543, 561, 594, 633, перестраиваемый 488-640;
• Варианты штативов - инвертированный AxioObserver, прямой AxioImager, прямой с фиксированнм столиком AxioExaminer.

Развитие генной инженерии, протеомики, биотехнологии, современной фармацевтики и биомедицины способствовало быстрому внедрению новых методов конфокальной микроскопии, и в настоящее время они широко используются в клеточной биологии.

Конфокальную флуоресцентную микроскопию можно рассматривать как разновидность традиционной флуоресцентной микроскопии, которая позволяет исследовать внутреннюю микроструктуру клеток, причем не только фиксированных, но и живых, идентифицировать микроорганизмы, структуры клетки и отдельные молекулы, наблюдать динамические процессы в клетках. Конфокальная флуоресцентная микроскопия в дополнение к этому обеспечила возможность трехмерного субмикронного разрешения объекта и существенно расширила возможность неразрушающего анализа прозрачных образцов. Повышение разрешающей способности достигается благодаря использованию в конфокальных микроскопах лазеров в качестве источников света и конфокальной диафрагмы для фильтрации внефокусной флуоресценции. Преимущество лазеров по сравнению с ртутными или ксеноновыми лампами заключается в монохроматичности и высокой параллельности испускаемого пучка света. Эти свойства лазерного излучения обеспечивают более эффективную работу оптической системы микроскопа, уменьшают число бликов, улучшают точность фокусировки пучка света. На образце лазер освещает не все поле зрения, как в ламповом флуоресцентном микроскопе, а фокусируется в точку. Конечно, при этом лазерный луч возбуждает флуоресценцию как в точке фокуса, так и во всех слоях образца, через которые проходит. И если эта внефокусная флуоресценция, излучаемая слоями, расположенными выше и ниже фокальной плоскости, регистрируется вместе с основным сигналом из фокуса объектива, это ухудшает разрешение оптической системы. Избавиться от внефокусной флуоресценции позволяет конфокальная диафрагма. Изменяя диаметр конфокальной диафрагмы, можно определять толщину оптического слоя вблизи фокуса лазерного луча, поэтому флуоресценция, испускаемая выше и ниже фокуса, оказывается дефокусированной на конфокальной диафрагме и не регистрируется. Благодаря этому конфокальная микроскопия обеспечивает улучшенное разрешение, в первую очередь вдоль оси Z.

Современная конфокальная микроскопия позволяет решать три основные задачи: изучение тонкой структуры клетки, колоколизации (пространственного взаиморасположения) в клетке двух или более веществ, а так же исследование динамических процессов, протекающих в живых клетках.

Благодаря улучшенному разрешению, особенно повышенному разрешению по оси Z, и возможности создавать серии «оптических» срезов, конфокальный микроскоп позволяет исследовать тонкую структуру объекта в трехмерном пространстве. Специальные программы позволяют создать из серии оптических срезов объемное изображение объекта (3D) и как бы рассматривать его под разными углами зрения, что может дать ценную информацию о форме клеток, цитоскелете, структуре ядра, хромосомах и даже локализации в них отдельных генов, а так же о взаиморасположении этих элементов.

Использование мультиспектрального (с несколькими флуорохромами) режима работы лазерного сканирующего конфокального микроскопа позволяет исследовать колоколизацию (пространственное взаиморасположение) в клетке двух или более разных веществ, например, белков, помеченных разными флуоресцентными красителями. Исследуя такие препараты в обычном флуоресцентном микроскопе, нельзя с уверенностью утверждать, находятся эти вещества рядом или одно под другим. С помощью метода оптических срезов и дальнейшей 3D-реконструкции объекта можно воссоздать объемное распределение веществ. Мультиспектральный режим так же позволяет проводить на конфокальном микроскопе исследования методом FISH.

Возможность получать временные серии изображений с высоким пространственным разрешением позволяет исследовать изменения, происходящие в клетках и их структурах во времени (4D реконструкция). Кроме того, благодаря наличию лазеров и системы сканирования можно осуществлять не только регистрацию временных изменений, но и осуществлять воздействие на клеточные структуры лазерным излучением с одновременным наблюдением протекающих процессов.

Методы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии получили широкое распространение в фундаментальных науках, а также все шире применяются в практических исследованиях и диагностической медицине.

Методы конфокальной микроскопии позволяют выявить способность веществ накапливаться в цитоплазме, ядре или других структурах клетки, зарегистрировать образование метаболитов, измерить кинетику накопления и метаболизма веществ в клетке, скорость выведения веществ из клетки, сравнить интенсивность метаболизма в различных клеточных линиях и в различных условиях. Эти методы все шире применяются в исследованиях механизмов действия как канцерогенов, так и лекарственных препаратов и противоопухолевых соединений, позволяют рассчитывать их эффективные концентрации.

Анализ интенсивности и формы спектров собственной флуоресценции позволяет распознавать нормальные и воспаленные клетки, и такой метод, в частности, предложен в качестве нового способа ранней диагностики шейки матки.

Подобрав комбинацию фильтров для нескольких типов собственной флуоресценции, возможно без проведения гистохимического окрашивания и трудоемкого получения и исследования множества срезов различать злокачественные и нормальные тканевые структуры в биопсийных пробах лимфоузлов пациентов с лимфоаденопатией различного происхождения.

Методы конфокальной микроскопии широко применяются в эмбриологии и гидробиологии, ботанике, зоологии при изучении структуры гамет, развития и формирования организмов.

Конфокальная микроскопия постоянно развивается, и в практику внедряются все новые методы исследований для изучения механизмов функционирования организмов на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, которые с каждым днем становятся все более востребованными в прикладных исследованиях и диагностике. Появление персонального конфокального лазерного сканирующего микроскопа FV10i позволяет расширить границы применения конфокальных методик. Микроскоп FV10i выполняет те же функции, что и высокотехнологичные исследовательские конфокальные сканирующие системы FV1000. В компактный корпус интегрированы все основные компоненты: 4 диодных лазера, спектральный сканирующий детектор, интуитивно понятное программное обеспечение, инкубатор, моторизованный столик, антивибрационная платформа и даже «темная комната». Этот микроскоп идеален для тех, кто только начинает работать с конфокальным методиками, для тех, кто хотел бы освободить исследовательские конфокальные микроскопы от рутинных задач, для диагностических лабораторий, лабораторий с ограниченным бюджетом, для обучающих задач и случаев проведения исследований в условиях ограниченного комфорта, например, на биологических станциях.

Товар временно недоступен. Аналог FV5000, Evident (Olympus).

Конфокальная лазерная сканирующая система нового поколения. Позволяет исследовать как живые, так и фиксированные клетки, ткани и целые организмы в шести измерениях. При работе с живыми образцами система сводит к минимуму фототоксичность и фотообесцвечивание образца и предоставляет возможность получения максимальной информации об объекте.

Может комплектоваться 2 лазерными сканерами для одновременного осуществления конфокального, флуоресцентного наблюдения и независимого сканирования вторым лазером для реализации FRAP, FLIP, фотоактивации, фотоконверсии, лазерного удаления и др.

Система спектральной детекции осуществляется на 3 или 5 спектральных каналах. Возможность подключения специального высокочувствительного детектора GaAsP PMT, с увеличением квантовой эффективности на 45%.

Совместимость с моторизованным столиком позволяет использовать FV1200 как инструмент для создания многомерных сканов по 4 координатам: XYZT.

Развитие генной инженерии, протеомики, биотехнологии, современной фармацевтики и биомедицины способствовало быстрому внедрению новых методов конфокальной микроскопии, и в настоящее время они широко используются в клеточной биологии.

Конфокальную флуоресцентную микроскопию можно рассматривать как разновидность традиционной флуоресцентной микроскопии, которая позволяет исследовать внутреннюю микроструктуру клеток, причем не только фиксированных, но и живых, идентифицировать микроорганизмы, структуры клетки и отдельные молекулы, наблюдать динамические процессы в клетках. Конфокальная флуоресцентная микроскопия в дополнение к этому обеспечила возможность трехмерного субмикронного разрешения объекта и существенно расширила возможность неразрушающего анализа прозрачных образцов. Повышение разрешающей способности достигается благодаря использованию в конфокальных микроскопах лазеров в качестве источников света и конфокальной диафрагмы для фильтрации внефокусной флуоресценции. Преимущество лазеров по сравнению с ртутными или ксеноновыми лампами заключается в монохроматичности и высокой параллельности испускаемого пучка света. Эти свойства лазерного излучения обеспечивают более эффективную работу оптической системы микроскопа, уменьшают число бликов, улучшают точность фокусировки пучка света. На образце лазер освещает не все поле зрения, как в ламповом флуоресцентном микроскопе, а фокусируется в точку. Конечно, при этом лазерный луч возбуждает флуоресценцию как в точке фокуса, так и во всех слоях образца, через которые проходит. И если эта внефокусная флуоресценция, излучаемая слоями, расположенными выше и ниже фокальной плоскости, регистрируется вместе с основным сигналом из фокуса объектива, это ухудшает разрешение оптической системы. Избавиться от внефокусной флуоресценции позволяет конфокальная диафрагма. Изменяя диаметр конфокальной диафрагмы, можно определять толщину оптического слоя вблизи фокуса лазерного луча, поэтому флуоресценция, испускаемая выше и ниже фокуса, оказывается дефокусированной на конфокальной диафрагме и не регистрируется. Благодаря этому конфокальная микроскопия обеспечивает улучшенное разрешение, в первую очередь вдоль оси Z.

Современная конфокальная микроскопия позволяет решать три основные задачи: изучение тонкой структуры клетки, колоколизации (пространственного взаиморасположения) в клетке двух или более веществ, а так же исследование динамических процессов, протекающих в живых клетках.

Благодаря улучшенному разрешению, особенно повышенному разрешению по оси Z, и возможности создавать серии «оптических» срезов, конфокальный микроскоп позволяет исследовать тонкую структуру объекта в трехмерном пространстве. Специальные программы позволяют создать из серии оптических срезов объемное изображение объекта (3D) и как бы рассматривать его под разными углами зрения, что может дать ценную информацию о форме клеток, цитоскелете, структуре ядра, хромосомах и даже локализации в них отдельных генов, а так же о взаиморасположении этих элементов.

Использование мультиспектрального (с несколькими флуорохромами) режима работы лазерного сканирующего конфокального микроскопа позволяет исследовать колоколизацию (пространственное взаиморасположение) в клетке двух или более разных веществ, например, белков, помеченных разными флуоресцентными красителями. Исследуя такие препараты в обычном флуоресцентном микроскопе, нельзя с уверенностью утверждать, находятся эти вещества рядом или одно под другим. С помощью метода оптических срезов и дальнейшей 3D-реконструкции объекта можно воссоздать объемное распределение веществ. Мультиспектральный режим так же позволяет проводить на конфокальном микроскопе исследования методом FISH.

Возможность получать временные серии изображений с высоким пространственным разрешением позволяет исследовать изменения, происходящие в клетках и их структурах во времени (4D реконструкция). Кроме того, благодаря наличию лазеров и системы сканирования можно осуществлять не только регистрацию временных изменений, но и осуществлять воздействие на клеточные структуры лазерным излучением с одновременным наблюдением протекающих процессов.

Методы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии получили широкое распространение в фундаментальных науках, а также все шире применяются в практических исследованиях и диагностической медицине.

Методы конфокальной микроскопии позволяют выявить способность веществ накапливаться в цитоплазме, ядре или других структурах клетки, зарегистрировать образование метаболитов, измерить кинетику накопления и метаболизма веществ в клетке, скорость выведения веществ из клетки, сравнить интенсивность метаболизма в различных клеточных линиях и в различных условиях. Эти методы все шире применяются в исследованиях механизмов действия как канцерогенов, так и лекарственных препаратов и противоопухолевых соединений, позволяют рассчитывать их эффективные концентрации.

Анализ интенсивности и формы спектров собственной флуоресценции позволяет распознавать нормальные и воспаленные клетки, и такой метод, в частности, предложен в качестве нового способа ранней диагностики шейки матки.

Подобрав комбинацию фильтров для нескольких типов собственной флуоресценции, возможно без проведения гистохимического окрашивания и трудоемкого получения и исследования множества срезов различать злокачественные и нормальные тканевые структуры в биопсийных пробах лимфоузлов пациентов с лимфоаденопатией различного происхождения.

Методы конфокальной микроскопии широко применяются в эмбриологии и гидробиологии, ботанике, зоологии при изучении структуры гамет, развития и формирования организмов.

Конфокальная микроскопия постоянно развивается, и в практику внедряются все новые методы исследований для изучения механизмов функционирования организмов на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, которые с каждым днем становятся все более востребованными в прикладных исследованиях и диагностике. Появление персонального конфокального лазерного сканирующего микроскопа FV10i позволяет расширить границы применения конфокальных методик. Микроскоп FV10i выполняет те же функции, что и высокотехнологичные исследовательские конфокальные сканирующие системы FV1000. В компактный корпус интегрированы все основные компоненты: 4 диодных лазера, спектральный сканирующий детектор, интуитивно понятное программное обеспечение, инкубатор, моторизованный столик, антивибрационная платформа и даже «темная комната». Этот микроскоп идеален для тех, кто только начинает работать с конфокальным методиками, для тех, кто хотел бы освободить исследовательские конфокальные микроскопы от рутинных задач, для диагностических лабораторий, лабораторий с ограниченным бюджетом, для обучающих задач и случаев проведения исследований в условиях ограниченного комфорта, например, на биологических станциях.

Товар временно недоступен. Аналог AMF5000_COM, Thermo FS.

Микроскоп исследовательского класса.

• Методы исследования — СП, ТП, ФК, ДИК, варел-контраст, поляризация, люминесценция;
• варианты управления микроскопом — ручной (A1/D1) и моторизованный (Z1);
• оптика скорректированная на бесконечность, высокого контраста, разрешения и цветовой коррекции (IC2S-оптика);
• система освещения проходящего света — галогеновая лампа (12В, 100 Вт), принцип Келера, светодиод LED; менеджер света (D1, Z1);
• конденсоры с большим рабочим расстоянием — А=0,35 (СП, ФК, ДИК); А=0,35 (СП, ФК, варел-контраст), А=0,55 (СП, ФК, ДИК)А=0,55 (СП, ФК, ДИК, варел-контраст), высокоаппертурный конденсор А=0,8/1,4; моторизованный (Z1);
• модуль для флуоресцентного анализа — ртутная лампа с саморегулировкой HBO103 (100 Вт), 6-позиционное револьверное устройство смены светоделителей;
• окуляры — 10х/20; 10х/23; 16х/16;
• объективы — 1,25х-100х, A-Plan, Achroplan, Plan-Neofluar, больших рабочих расстояний LD Plan-Neofluar, Apochromat;
• система дополнительной смены увеличения «Оптовар» 1,25х; 1,6х; 2,5х;
• револьверное устройство для крепления 6 объективов;
• насадки — бинокулярная, бинокулярная насадка с фото / видеовыходом;
• устройство ACR-идентификации объективов и светоделительных блоков (D1, Z1);
• предметные столики — механический, скользящий, сканирующий, нагревательный, право – или левостороннее управление;
• система подключения микроскопа — RS232, TCPIP, USB, CAN, RS232, Closed Loop, Service interface;
• панель управления (D1, Z1);
• TFT-сенсорный дисплей для управления микроскопом (Z1);
• система защиты от влаги;
• возможность установки CO₂ инкубатора для поддержания pH, температуры, влажности;
• возможность установки модулей для TIRF и PALM в модели Z1;
• габариты, ШхДхВ, мм — 386x613x646.

Все микроскопы Zeiss комплектуются нашими специалистами по Вашему запросу.

Товар временно недоступен. Аналог 83513, MAGUS.

• Увеличение — 10х-40х;
• зум — 1:4,5;
• рабочее расстояние, мм — 97;
• окуляры — WF 10х/20; WF 20х/12;
• источник проходящего и отраженного света — светодиод;
• визуальная насадка — тринокулярная;
• микроскоп имеет C-mount адаптер для подсоединения видеокамеры или фотоаппарата;
• габариты, мм — 210×290×360;
• масса, кг — 6.

Товар временно недоступен. Аналог 83513, MAGUS.

Микроскоп снабжен системой освещения проходящим светом или светом, падающим от наклонного осветителя, обеспечивая наблюдение изображений объектов с различными свойствами – прозрачных, полупрозрачных или непрозрачных.

• Увеличение – 10х-40х;
• зум – 1:4,5;
• рабочее расстояние, мм – 97;
• окуляры - WF 10х/20; WF 20х/12;
• источник проходящего и отраженного света – светодиод;
• визуальная насадка – тринокулярная;
• габариты, мм - 210х290х360;
• масса, кг – 6.

Аксессуары и опции: видеокамера, объективы (0,5х и 2х), окуляры, микрометр МОВ-1-16х, объект-микрометр, осветитель ВОЛ-И, осветитель волоконный ОВ-12, осветитель боковой ОБ-19, осветитель кольцевой люминесцентный, осветитель кольцевой светодиодный, лампы, конденсор темного поля, поляризационный комплект, предметный столик.

Товар временно недоступен. Аналог 83513, MAGUS.

Микроскоп предназначен для наблюдения прямого и объемного изображения мелких объектов, а также для выполнения разнообразных тонких работ.

• Увеличение – 7х-90х;
• рабочее расстояние, мм – 100;
• зум – 0,7:4,5;
• окуляры широкоугольные - WF 10х/20; WF 10x/20 со шкалой, WF 20х/10;
• источник проходящего и отраженного света – светодиод;
• визуальная насадка – тринокулярная;
• габариты, мм - 240х320х360;
• масса, кг – 6.

Аксессуары и опции: видеокамера, объективы 0,5х и 2х, микрометр МОВ-1-16х, объект-микрометр, осветитель ВОЛ-И, осветитель волоконный ОВ-12, осветитель боковой ОБ-19, осветитель кольцевой люминесцентный, осветитель кольцевой светодиодный, лампы, конденсор темного поля, поляризационный комплект, предметный столик.

Товар временно недоступен. Аналог 83513, MAGUS.

Микроскоп содержит штатив с поворотным держателем оптической головки для перемещения в вертикальном (до 300 мм) и горизонтальном (до 320 мм) направлениях.

• Увеличение – 10х-90х;
• зум – 1:4,5;
• окуляры широкоугольные - 10х/20; 20х/12;
• источник освещения – кольцевой люминесцентный осветитель;
• визуальная насадка – тринокулярная;
• максимальный вынос оптической головки в горизонтальном направлении, мм – 320;
• максимальный вынос оптической головки в вертикальном направлении, мм – 320;
• габариты, мм - 700х460х490;
• масса, кг – 25.

Аксессуары и опции: видеокамера, объективы 0,5х и 2х, окуляры, микрометр МОВ-1-16х, объект-микрометр, осветитель ВОЛ-И, осветитель волоконный ОВ-12, осветитель боковой ОБ-19, осветитель кольцевой светодиодный, лампы, предметный столик.

Товар временно недоступен. Аналог 83513, MAGUS.

Микроскопы с новой оптикой, оснащенной призмой Порро, обеспечивающей легкость и компактность конструкции.

• Новый диаскопический/эпископический штатив LED - возможность наблюдения широкого спектра образцов, включая чашки Петри, растения, насекомые, мелкие животные и минералы;
• штатив LED оснащен встроенной системой диаскопического и эпископического освещения; в источнике света используется очень яркие светодиоды;
• большое рабочее расстояние 100 мм обеспечивает надежную фокусировку даже при явно неровных поверхностях образца;
• специальные окуляры с диоптрийной настройкой для обеспечения парфокальности;
• благодаря простому закреплению дополнительных объективов достигается расширение поля зрения и увеличение рабочего расстояния;
• возможность выбора плоских и диаскопических штативов со встроенной галогенной лампой; широкий набор систем освещения и предметных столиков.

Технические характеристики SMZ 445:

• оптическая система - спаренный объектив (схема Грену);
• общее увеличение - 8х – 35х (4х – 70х при смене окуляра и/или объектива);
• окуляры - 10x/21, 15x/14, 20x/12 диапазон регулировки межзрачкового расстояния от 54 до 75 мм;
• диапазон трансфокации - 0,8х – 3,5х (коэффициент трансфокации: 4.4:1);
• объективы - AL 0,5x, 0,7х;
• рабочее расстояние - 100 мм (стандартная конфигурация), 127,5 мм (AL 0,7х), 181 мм (AL 0,5х);
• угол наклона выходных зрачков - 45º.

Все микроскопы Nikon комплектуются по запросу пользователя; обращайтесь к специалистам Диаэм.

Товар временно недоступен. Аналог 82908, MAGUS.

• Высокая скорость моторизированного контроля и захвата изображения;
• оптическая система — CFI60, настроенная на бесконечность;
• тубус — бинокулярный, бинокулярный эргономичный;
• окуляры с диоптрийной подстройкой — CFI 10х/22, 12,5х/16, 15х/14,5;
• осветитель — галогеновый 100 Вт, 30 Вт;
• револьвер объективов — 6-ти местный;
• объективы CFI60 — 4x, 10x, 20x, 40х, 60х, 100х Oil;
• предметный столик — моторизированные столики с датчиками положения и перемещением по осям X-Y; 400 х 300 мм; фиксированные, прикрепляемые механические и др.;
• кнопочная панель управления спереди и с боков микроскопа;
• информативный цифровой дисплей на корпусе микроскопа;
• возможность управления с удаленных блоков управления, с компьютера, джойстиком;
• система лучшей фокусировки автоматически корректирует дрейф фокуса при добавлении реагентов и длительных наблюдениях;
• возможность исследований в фазовом контрасте с NA-объективами без использования дополнительного фазирующего кольца (уже встроено в корпус микроскопа);
• новая серия широкопольных объективов CFI S Plan Fluor ELWD и для фазового контраста CFI S Plan Fluor ELWD 20х/ 40х/ 60х, CFI Plan Apochromat 20x;
• ПО NIS-Elements обеспечивает быстрый, точный и доступный контроль одновременно для всего оборудования, входящего в систему (микроскоп, камеры, периферия и др. компоненты);
• встраиваемые осветители;
• осветитель моторизированного лазера TIRF специально разработан для Ti-E и Ti-U; угол наклона лазера можно легко запомнить и с помощью контрольной панели возобновить; это устройство переключается с записи мультиволновых изображений TIRF на изображения флуоресценции.

Модификация Ti-E

• Флагманская модель;
• моторизированные столик и револьвер;
• 4 моторизированных порта, моторизированное переключение портов;
• линза Бертрана — подключаемая и фокусируемая вручную;
• механизм грубой рефокусировки;
• фокусировка путем вертикального перемещения моторизированного револьвера объективов;
• моторизированный (шаговый двигатель);
• возможность переключения между грубой / средней / точной фокусировкой; минимальный проход — 0,01 мкм, 0,02 мкм (с датчиком контроля);
• регулировка интенсивности излучения, выключение осветителя, VPD на передней части корпуса,
• управление с помощью пульта контроллера;
• моторизированная турель;
• моторизированный 6-позиционный револьвер со слотом под DIC;
• контроль — джойстик, ПК.